Мы с вами как рядовые потребители привыкли воспринимать пищевую индустрию как достаточно простой процесс, масштабируя наш опыт готовки на кухне на промышленные масштабы – большая мясорубка, большой блендер, большая печка, большой холодильник и прочее. При этом мы продолжаем рост требований к срокам годности, качеству и уникальности продуктов, вынуждая производителей изучать свой продукт досконально, понимать не только механику процесса, но и его биохимию – как сочетаются в продукте белки, жиры и углеводы, как на них влияет термическая обработка, каким образом можно поднять влагоудерживающие свойства продукта, как соединить в стабильный комплекс различное сырье.
Первоначально ответы строились на максимизации свойств самого сырья – использование дополнительной клейковины в тесте позволяло производить стабильную выпечку с не зерновыми включениями, добавление изолятов сои, гидроколлоидов и грамотная работа с фосфатами поднимали выход мясных продуктов, подобранные режимы посола рыбы позволяли получать структуру, подобную сашими, однако всегда казалось, что можно получить больше эффекта. Замедление эволюции пищевой промышленности привело к активным изучениям биохимических преобразований внутри тех или иных продуктов. Биохимики обратили внимание на естественный структурообразователь – тканевую трансглютаминазу (известную как pTG, tTG, TG1, TG2, фактор свертывания крови XIII и другие), отвечающую в нашем организме за стабилизацию и организацию сложных взаимодействий тканей (соединение между собой отдельных клеток в многоклеточные ткани), процессы заживления ран и процессы обновления клеток организма. У tTG есть естественный ограничитель – для запуска ее работы нужен свободный кальций, который в норме внутри организма в дефиците и выдается дозированно только для осуществления биохимических процессов. Тканевая трансглютаминаза встречается повсеместно – в тканях животных, растений, грибов [1].
Сходный продукт нашелся в микробиальном мире – бактерии Streptomyces mobaraensis (а также Streptomyces ladakanum, Streptomyces lividans, Bacillus spp., Actinomycetes) способны производить специфичный белок, который после выхода из клетки микроба активируется его бактериальной протеазой, превращаясь в активный фермент – микробную трансглютаминазу. Микробная трансглютаминаза (MTGase) – фермент класса трансфераз (EC 2.3.2.13), катализирующий образование ковалентных поперечных связей между белковыми молекулами. Основная реакция заключается в образовании ε-(γ-глутамил)лизиновых изопептидных связей между γ-карбоксамидной группой остатка глутамина и ε-аминогруппой остатка лизина в белках или пептидах [2]. Микробный фермент значительно меньше по молекулярному весу, чем тканевая трансглютаминаза, за счет чего он быстрее распределяется по объему пищевого продукта и приступает к своей работе – разрешению оригинального белка и формированию новых термонеобратимых связей. У фермента MTGase широкий диапазон доступных субстратов – он одинаково хорошо работает с мышечными белками (актин и миозин), казеином, белками бобовых, клейковиной, белками плазмы, белками яиц и многими другими. Чем выше содержание глутамина и лизина, тем большее количество связей образуется в продукте.
В результате ферментативной реакции происходит сшивание белковых молекул, что приводит к изменению их функциональных свойств:
увеличению вязкости;
повышению гелеобразующей способности;
улучшению водоудерживающей способности;
формированию прочной белковой сети [3].
По сути, трансглютаминаза действует как катализатор формирования новых связей между отдельными молекулами белка, в том числе тех, которые в норме никогда бы не сформировались. Поэтому в пищевой промышленности MTGase часто называют «фермент, сшивающий белки» или «мясной клей» [4].
Микробная трансглютаминаза формирует формирует изопептидные связи с образованием термонеобратимой ε-(γ-глутамил)лизиновой связи. В виде формулы этот процесс выглядит так: Gln–CONH2+Lys–NH2→Gln–CO–NH–Lys+NH3. Такие связи формируют внутримолекулярные и межмолекулярные сшивки, приводящие к полимеризации белков и образованию пространственной белковой сети. Именно эта функция mTGase наиболее интересна для применения в пищевой промышленности – получившиеся трехмерные структуры помимо придания плотности продукту также обладают повышенной эмульгирующей и влагоудерживающей способностью [5].
Как и у многих других биологических энзимов, у микробной трансглютаминазы есть допустимые и оптимальные технологические режимы. Фермент из Streptomyces mobaraensis демонстрирует максимальную активность при pH ~6 и температуре около 48 °C [6,7]. Для проведения реакции с белками мяса или рыбы необходимо наличие соли, которая ускоряет солюбизацию белка, повышая его доступность для фермента.
Диаграмма зависимости активности препарата мТг от уровня рН и температуры [6]
Для безопасности конечного потребителя важно, чтобы в готовом продукте фермент не проявлял остаточной активности и полностью разрушился пищеварительными ферментами. Ряд авторов [6, 8, 9] указывали в качестве температуры инактивации значения 60-80°С. Тем не менее, стоит отметить, что инактивация происходит не мгновенно (даже при +80°С требуется не менее 1 минуты), при этом, высокое содержание жира и низкая активность воды в продукте дополнительно замедляют процесс инактивации фермента. Таким образом, при недостаточной экспозиции фермент может сохранить свою активность в готовой продукции и негативно сказаться на здоровье потребителя. Несмотря на статус GRAS в США и наличия разрешения использования в качестве технологического фермента в некоторых странах ЕС, mTG остается недостаточно изученным ферментом. Влияние тканевой трансглутаминазы на развитие аутоиммунных заболеваний (например, целиакии) – одна из основных тем исследований, проводимых различными научными центрами по всему миру [4,11,12]. Это аутоиммунное заболевание, связанное с реакцией иммунной системы на глиадин (компонент белка плшеницы глютена). Доказано, что заболевание протекает за счет работы собственной трансглютаминазы организма – tTG, который модифицирует пептиды глиадина, полученные из глютена, образуя белковые структуры, которые иммунная система воспринимает как чужеродные. Кроме того, употребление белков, связанных с глютеном, таких как гордеин из ячменя, секалин из ржи или авенин из овса, может вызывать аналогичные воспалительные реакции в организме человека. Глиадин – мощный иммунотоксический агент, который может нарушать формирование межклеточных контактов в эпителиальных клетках. Роль привнесенной микробной трансглютаминазы описывается либо через образование комплексов глиадин-MTGase, либо формирование новых антигенов (в том числе за счет проведения реакции дезаминирования белка), либо усиливание иммунного ответа у людей с целиакией [4, 5]. Кроме того, mTGase может повышать проницаемость кишечника [10], что еще больше способствует проникновению антигенов и может повышать риск пищевой гиперчувствительности.
В промышленности mTGase представлена в нескольких коммерческих формах. Наиболее распространенная – нормализация фермента по активности до 100 условных единиц добавлением мальтодекстрина. Компания Ajinomoto, выпускающая mTG с торговой маркой Activa, добавляет в некоторых решениях к ферменту начальный белковый субстрат в виде казеинатов, КМБ, КСБ, соевых белков или глютена в зависимости от продукта, для которого будет использоваться комплекс. Основной негативной особенностью комплексных добавок и нормализованного фермента остается потеря активности энзима при хранении при положительных температурах и при доступе кислорода [13]. В качестве способов стабилизации производители предложили капсулировать фермент в барьерную полимерную или белково-полисахаридную матрицу, формируя микрочастицы (обычно 1–1000 µm), разрушающиеся под действием влаги продукта или при нагревании. Наиболее распространённые оболочки – казеинаты, желатин, гуммиарабик, мальтодекстрин, альгинаты, хитозан, липидные матрицы. Микрокапсулирование часто применяется для сохранения активности фермента при технологических воздействиях (сушка, окисление, колебания pH) – капсула стабилизирует третичную структуру фермента и уменьшает денатурацию при сушке. Помимо сохранения активности фермента в неблагоприятных условиях, подобное капсулирование позволяет регулировать активность фермента в продукте, предотвращая переуплотнение белковой сетки продуктов с длительной технологической экспозицией перед термообработкой [14, 15]. Ряд компаний, работающих на российском рынке, утверждают, что подобная технология также способствует маскировке mTGase в составе КПД и в готовой продукции, что позволяет обойти ограничения ТР ТС 021/2011 и ТР ТС 029/2012. Тем не менее, микрокапсулирование не изменяет принципиальной структуры белка (в противном случае нарушится структура активного центра и фермент потеряет протеолитическую либо «сшивающую» способность), фермент высвобождается из капсулы внутри обрабатываемого продукта и может быть выявлен в готовой продукции в активной либо инактивированной формах.
Лабораторный контроль микробной трансглютаминазы в пищевой продукции
Расширение применения микробной трансглютаминазы (mTG) в пищевой промышленности закономерно приводит к необходимости разработки надежных методов лабораторного контроля данного фермента в сырье, пищевых ингредиентах и готовой продукции. Особую сложность аналитического выявления представляет тот факт, что современные коммерческие формы фермента могут содержать различные стабилизирующие компоненты, включая белковые субстраты, носители и системы микрокапсулирования, которые способны существенно затруднять его обнаружение стандартными аналитическими методами.
В последние годы для контроля белковых технологических ферментов всё более широкое распространение получают иммунологические методы анализа, в частности иммуноферментный анализ (ИФА). Данный подход основан на высокоспецифическом взаимодействии антиген–антитело и позволяет выявлять белковые молекулы с высокой чувствительностью даже в сложных пищевых матрицах.
Российским разработчиком методов контроля качества и безопасности пищевых продуктов – компанией «Хема»совместно с Ростовским референтным центром Россельхознадзора разработаны специализированные ИФА-тест-системы для выявления микробной трансглютаминазы в пищевых продуктах, пищевых добавках и технологических ингредиентах. Метод основан на использовании высокоспецифичных антител к микробной трансглютаминазе Streptomyces spp., что обеспечивает селективное обнаружение фермента независимо от формы его технологического применения.
Ключевой особенностью разработанных тест-систем является возможность выявления:
свободной микробной трансглютаминазы;
фермента, стабилизированного белковыми субстратами (казеинаты, соевые белки, глютен и др.);
фермента в составе комплексных пищевых добавок;
микрокапсулированных форм микробной трансглютаминазы, используемых для повышения стабильности фермента и регулирования его активности в продукте.
Наличие микрокапсулированных форм фермента представляет отдельную аналитическую проблему. Полимерные, белково-полисахаридные или липидные оболочки способны препятствовать эффективному извлечению фермента из образца и снижать чувствительность анализа. Для решения данной задачи специалистами компании «Хема» была разработана специальная процедура пробоподготовки, включенная в последнюю версию методики ИФА.
Данная пробоподготовка обеспечивает:
разрушение микрокапсульных оболочек;
эффективную экстракцию фермента из белковых и технологических матриц;
высвобождение фермента из стабилизирующих комплексов.
Это позволяет выявлять микробную трансглютаминазу даже в случаях, когда производители используют технологии микрокапсулирования или комплексные белковые носители.
За годы практического применения методика ИФА «Хема» показала высокую воспроизводимость результатов и устойчивость к различным пищевым матрицам. В настоящее время данные тест-системы широко используются в лабораторной практике и применяются более чем в 100 лабораториях, включая лаборатории системы государственного контроля, в том числе Роспотребнадзора и Россельхознадзора. Накопленный опыт применения подтверждает аналитическую надежность и практическую эффективность данного метода для мониторинга безопасности пищевой продукции. Дополнительным подтверждением аналитической надежности методики являются результаты сличительных (межлабораторных) испытаний, проведённых с участием профильных лабораторий. В рамках данных исследований было показано, что ИФА-методики «Хема» обеспечивают высокую воспроизводимость и сопоставимость результатов при анализе различных типов пищевых матриц. Полученные данные продемонстрировали стабильность выявления микробной трансглютаминазы, в том числе при низких концентрациях и в сложных технологических формах, включая микрокапсулированные препараты.
Результаты сличительных испытаний подтвердили корректность методики, её устойчивость к вариациям пробоподготовки и оборудования, а также возможность применения в рамках рутинного лабораторного контроля. Это дополнительно свидетельствует о высокой степени верификации метода и его пригодности для использования в системе государственного и производственного контроля безопасности пищевой продукции.
Регуляторные аспекты применения микробной трансглютаминазы
Использование микробной трансглютаминазы в пищевой промышленности регулируется законодательством различных стран и международных объединений. В странах Евразийского экономического союза вопросы безопасности пищевых продуктов регулируются техническими регламентами ТР ТС 021/2011 «О безопасности пищевой продукции»иТР ТС 029/2012 «Требования безопасности пищевых добавок, ароматизаторов и технологических вспомогательных средств», которые предусматривают необходимость контроля используемых технологических ингредиентов и обеспечения прозрачности состава продукции.
В ряде стран использование микробной трансглютаминазы также вызывает активные научные и регуляторные дискуссии. В частности, в Китае применение фермента требует обязательного декларирования в составе продукта, а в Швейцарии и ряде стран Европейского союза введены дополнительные требования к маркировке продукции, содержащей технологические ферменты. В отдельных сегментах пищевой промышленности применение фермента может быть ограничено или требовать специального разрешения.
Подобные регуляторные подходы связаны с необходимостью обеспечения прозрачности пищевых технологий и информирования потребителей о составе продуктов.
Развитие биотехнологических методов модификации белков в пищевой промышленности открывает новые технологические возможности, однако одновременно повышает требования к прозрачности состава продукции и лабораторному контролю применяемых ферментных препаратов. Микробная трансглютаминаза является одним из наиболее активно используемых технологических ферментов, способных существенно изменять структурные свойства белковых систем и функциональные характеристики пищевых продуктов. Зарубежная и, в меньшей степени, отечественная научная периодика описывает множество решений по применению микробиальной трансглютаминазы для пищевой промышленности. Несмотря на то, что фермент микробиального происхождения, также называемый в просторечии «мясной клей», применялся изначально при только производстве сурими и соединения мясных и рыбных изделий, основным каналом продаж стала молочная промышленность, в которой фермент зачастую остается в продукте в активной форме. Достаточно распространена попытка применять его и в хлебопечении как для стабилизации структуры продукта, так и для выпуска безглютеновой продукции или продукции со сниженным содержанием пшеничной муки, замещая традициооные для этой отрасли ферменты-оксидазы.
Современные технологические решения, включая стабилизацию фермента белковыми субстратами и микрокапсулирование, могут существенно усложнять аналитическое выявление фермента. В этих условиях особое значение приобретают высокочувствительные иммунологические методы анализа. Использование ИФА-методик позволяет эффективно выявлять в готовой продукции микробную трансглютаминазу, внесенную в различных технологических формах (сухой, жидкой, капсулированной), выявлять даже следовые количества фермента (менее 10 единиц активности фермента на 100 кг продукта) и обеспечивает надежный лабораторный контроль содержания фермента в пищевой продукции.
Таким образом, несмотря на кажущееся удобство и простоту применения микробной трансглютаминазы, не стоит забывать о потенциальны рисках для здоровья потребителей и том факте, что современные методы контроля фальсификаций являются важным элементом обеспечения прозрачности пищевых технологий, соблюдения требований технических регламентов и защиты интересов потребителей. В любом продукте необходимый потребителю технологический эффект может быть достигнут легальным путем – за счет качественной работы с сырьевыми материалами, использования подготовленных белков (изолятов и гидролизатов), влиящих на реологию о органолептику продукта, ввода комплексных пищевых добавок и подбора оптимальных технологических параметров.
Список литературы:
Т.Н. Пивненко Применение трансглутаминазы в пищевой промышленности Научные труды Дальрыбвтуза. 2021. № 1 (т. 55) с. 5-22
Properties and applications of microbial transglutaminase. K Yokoyama, N Nio, Y Kikuchi // Appl Microbiol Biotechnol. 2004 May;64(4):447-54. doi: 10.1007/s00253-003-1539-5. Epub 2004 Jan 22 https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/14740191/
Microbial transglutaminase production: understanding the mechanism. Dongxu Zhang, Yang Zhu, Jian Chen // Biotechnol Genet Eng Rev. 2010:26:205-22. doi: 10.5661/bger-26-205.
Processed Food Additive Microbial Transglutaminase and Its Cross-Linked Gliadin Complexes Are Potential Public Health Concerns in Celiac Disease Aaron Lerner and Torsten Matthias // Int. J. Mol. Sci. 2020, 21(3), 1127; https://doi.org/10.3390/ijms21031127 https://www.mdpi.com/1422-0067/21/3/1127
Microbial transglutaminase in food biotechnology: from biochemical mechanisms to industrial applications Marek Kieliszek // Appl Microbiol Biotechnol. 2026 Jan 24;110(1):38. doi: 10.1007/s00253-025-13697-7 https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/ articles/PMC12835111
Глотова И.А. Подходы к получению и применению микробной трансглутаминазы в эмульгированных мясо-растительных системах // И.А. Глотова, Е.Е. Курчаева, Е.Ю. Ухина, А.О. Рязанцева. Вестник ВГУИТ/Proceedings of VSUET, Т. 79, № 4, 2017 с.210-219.
Purification and characterization of a high-salt-resistant microbial transglutaminase from Streptomyces mobaraensis Mingfei Jin, Jinge Huang, Zhengpei Pei et al., Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic Volume 133, November 2016, Pages 6-11 https://doi.org/10.1016/j.molcatb.2016.07.005 https://www.sciencedirect.com/ science/article/abs /pii/S1381117716301205
Thermal stability and conformational changes of transglutaminase from a newly isolated Streptomyces hygroscopicus Li Cui, Guocheng Du, Dongxu Zhang, Jian Chen // Bioresource Technology. Volume 99, Issue 9, June 2008, Pages 3794-3800 https://doi.org/10.1016/ j.biortech.2007.07.017
Characterisation and optimisation of microbial production of transglutaminase produced by Streptoverticillium cinnamoneum Vitaliy Kolotylo, Alicja Synowiec, Kamil Piwowarek, Iwona Gientka, Marek Kieliszek // Appl Microbiol Biotechnol. 2025 Oct 16;109(1):228. doi: 10.1007/s00253-025-13606-y
The frequently used industrial food process additive, microbial transglutaminase: boon or bane Lerner A, Benzvi C, Vojdani A (2025) // Nutrition Reviews, Volume 83, Issue 3, March 2025, Pages e1286–e1294, https://doi.org/10.1093/nutrit/nuae087
Processed Food Additive Microbial Transglutaminase and Its Cross-Linked Gliadin Complexes Are Potential Public Health Concerns in Celiac Disease Lerner A., Matthias T. // Int. J. Mol. Sci. 2020, 21(3), 1127, DOI: 10.3390/ijms2103112
Kieliszek M. Microbial transglutaminase in food biotechnology: from biochemical mechanisms to industrial applications. Applied Microbiology and Biotechnology, 2026.
Properties and applications of microbial transglutaminase Yokoyama K., Nio N., Kikuchi Y. // Applied Microbiology and Biotechnology, 2004.
Optimization of microencapsulation conditions of transglutaminase by freeze drying Hilal Isleroglu, Izzet Turker, Banu Koc, Mehmet Tokatli // J Food Sci Technol. 2019 Oct 16;56(11):4925–4937. doi: 10.1007/s13197-019-03962-9 https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov /articles/PMC6828876
Improving the performance of transglutaminase-crosslinked microparticles for enteric delivery Fernando Tello, Ana S. Prata, Rodney A.F. Rodrigues, etc // Food Research International Volume 88, Part A, October 2016, Pages 153-158 https://doi.org/10.1016/j.foodres.2016.02.020
Источник фото: 123rf.com
АвторЗахаркин Денисруководитель департамента исследований и разработок, Крист, ООО
АвторПетухов Павелзаместитель генерального директора по развитию, Хема, ООО
Выступление Мясного Эксперта на конференции "Мясной состав" организованной компаний КРИСТ в рамках самой важной для мясопереработчиков выставки Агропродмаш 2026. Рассказал про физику кадров на мясокомбинате, как устрое...
Крист выпустили ролик фильм про то, как прошел волейбольный чемпионат среди мясокомбинатов!
Пляжный волейбол, 90-е и тысяча гостей: влог с IX Волейбольного турнира КРИСТ. Показываем, как мясопереработчики со...
Купил на завтрак готовой еды — нарезку докторской :)) К самой колбасе нареканий нет - отличная. Заинтересовался QR-кодом, прошёл на сайт и немного расстроился, что в описании этого рисунка сказано: «Она была создана во...
Пополнение коллекции.
Выставка Агропродмаш 2026 уже на следующей неделе!
Решил в канун выставки устроить у себя на рабочем столе микро-выставку и похвастаться своей коллекционной моделью шприца. Такой только у м...
Итак, мы реализовали функционал, который позволит выбирать количество приходящих рассылок на ваш e-mail в неделю.
ШАГ 1. Для этого в почте, куда приходит наша рассылка с новостями, дойдите до самого низа расс...
Добрый день, коллеги! В пельменном цехе образуются остатки теста, тесто со следами фаршей от пельменей, в конце смены шрот теста помещается в морозильную каме...
Доброго времени суток.
В колбасном цехе демонстративно уволились операторы колбасных шприцев. Теперь стоит производство и вопрос, где взять инструкцию, чтобы...
Коллеги цифровизаторы-интеграторы, айтишники и все умеющие отличать штрих-коды от датаматриксов!
Объясните мне за мою покупку во всех штрихах - тут 5 штри...